Протоколы внедрения клеточно-свободной системы экспрессии TX-TL на основе Escherichia coli для синтетической биологии

Protocols for Implementing an <em>Escherichia coli</em> Based TX-TL Cell-Free Expression System for Synthetic Biology
Zachary Z. Sun, Clarmyra A. Hayes, Jonghyeon Shin, Filippo Caschera, Richard M. Murray, Vincent Noireaux
2013-09-16

Escherichia coli TX-TLРНК-полимераза T7система бесклеточного экспрессированияэндогенная транскрипция-трансляциярепрессоры lac/tet
Идеальные клеточно-свободные системы экспрессии теоретически могут имитировать in vivo клеточную среду на контролируемой in vitro платформе. Это полезно для контролируемой экспрессии белков и генетических цепей, а также для предоставления среды прототипирования для синтетической биологии. Для достижения последней цели клеточно-свободные системы экспрессии, сохраняющие эндогенные механизмы транскрипции и трансляции Escherichia coli, способны точнее отражать in vivo клеточную динамику по сравнению с системами, основанными на транскрипции с помощью РНК-полимеразы T7. Мы описываем подготовку и выполнение эффективной эндогенной клеточно-свободной системы транскрипции-трансляции (TX-TL) на основе E. coli, которая может производить эквивалентные количества белка по сравнению с системами на основе T7 при снижении стоимости на 98% по сравнению с аналогичными коммерческими системами. Описана подготовка буферов и грубого клеточного экстракта, а также проведение тройного TX-TL реакции. Весь протокол занимает пять дней на подготовку и дает достаточно материала для хранения до 3000 отдельных реакций в одной подготовке. После подготовки каждая реакция занимает менее 8 часов от установки до сбора данных и анализа. Могут быть добавлены механизмы регуляции и транскрипции, экзогенные для E. coli, такие как репрессоры lac/tet и РНК-полимераза T7. Также можно регулировать эндогенные свойства, такие как скорости деградации мРНК и ДНК. Система клеточно-свободной экспрессии TX-TL была продемонстрирована для масштабной сборки цепей, исследования биологических явлений и экспрессии белков как под промоторами T7, так и под эндогенными промоторами. Прилагаются математические модели. Полученная система обладает уникальными приложениями в синтетической биологии в качестве среды прототипирования, или «TX-TL биомолекулярной макетной платы».
1
Описана система клеточно-свободной экспрессии TX-TL на основе эндогенного E. coli, сохраняющая нативные механизмы транскрипции-трансляции и точнее отражающая in vivo динамику, чем системы на T7.
2
Отдельная TX-TL реакция требует менее 8 часов от установки до сбора и анализа данных.
3
Полный протокол (буферы, грубый клеточный экстракт, трехтрубочная TX-TL реакция) занимает пять дней на подготовку и обеспечивает материал для до 3000 одиночных реакций за одну подготовку.
4
Система производит эквивалентное количество белка по сравнению с системами на T7 при снижении стоимости на 98% по сравнению с аналогичными коммерческими системами.
5
Система поддерживает добавление экзогенных регуляторов (например, lac/tet репрессоры, T7 РНК-полимераза), настройку эндогенных свойств (скорости деградации мРНК и ДНК) и продемонстрирована для массовой сборки цепей и экспрессии белков под обоими типами промоторов.

Основанная на эндогенных механизмах транскрипции–трансляции Escherichia coli клеточно‑свободная система экспрессии (буферы и грубый клеточный экстракт для трёхтрубочных реакций)

Протоколы подготовки и выполнения, обеспечивающие эффективную экспрессию белков и генетических цепей, экономичное масштабирование (до ≈3000 реакций из одной подготовки), возможность настройки регуляторных компонентов и скоростей деградации и применение в качестве прототипирующей TX‑TL «биомолекулярной макетной платы»

Publication Details
Publication Date
2013-09-16
Journal
Publisher
ISSN
Access Type
Author Information
Authors
Zachary Z. Sun
Clarmyra A. Hayes
Jonghyeon Shin
Filippo Caschera
Richard M. Murray
Vincent Noireaux
Explore further
Open the scid.ai AI chat with a ready-made request: it will find papers on a similar topic and help build a literature review.
Find similar papers in the chat
Make a presentation
100%